Микробный состав эякулята у пациентов с астенозооспермией по результатам исследования методом полимеразной цепной реакции в реальном времени

Настоящее исследование проведено с целью оценить микробный состав эякулята у пациентов с астенозооспермией в сравнении с нормозооспермией при использовании полимеразной цепной реакции в реальном времени. В процессе ретроспективного исследования с применением полимеразной цепной реакции в реальном времени (тест-система «Андрофлор», ООО НПФ «ДНК-Технология», Россия) изучен микробный состав эякулята 242 пациентов с астенозооспермией и 377 - с нормозооспермией. Микробную ДНК (как общую бактериальную массу) в количестве не менее 10³ ГЭ/мл обнаружили в 268 (71,1 %) из 377 образцов эякулята группы с нормозооспермией и в 185 (76,4 %) из 242 образцов группы с астенозооспермией. По данным кластерного анализа микробиота положительных проб была представлена одним из восьми устойчивых микробных кластеров с численным преобладанием определенной группы бактерий. При астенозооспермии статистически значимо (р < 0,05) чаще определяли кластер с преобладанием Lactobacillus spp., а среди определяемых отдельных групп бактерий статистически значимо (р < 0,05) чаще выявляли Bacteroides spp. / Porphyromonas spp. / Prevotella spp., Megasphaera spp. / Veillonella spp. / Dialister spp. и Lactobacillus spp. В сравнении с нормозооспермией.

1. Faddy M. J., Gosden M. D., Gosden R. G. A demographic projection of the contribution of assisted reproductive technologies to world population growth // Reproductive Biomedicine Online. 2018. Vol. 36, no. 4. P. 455-458.

2. WHO Laboratory Manual for the Examination and Processing of Human Semen / World Health Organization. 5th ed. URL: https://iris.who.int/bitstream/handle/10665/44261/9789241547789_eng.pdf?sequence=1.

3. Ruggeri M., Cannas S., Cubeddu M., Molicotti P., Piras G., Dessole S., Zanetti S. Bacterial agents as a cause of infertility in humans // New Microbiologica. 2016. Vol. 39, no. 3. P. 206-209.

4. EAU Guidelines / Europian Association of Urology. 2021.

5. Pagliuca C., Cariati F., Bagnulo F., Scaglione E., Carotenuto C., Farina F., D ’Argenio V, Carraturo F., D ’Aprile P., Vitiello M., Strina I., Alviggi C., Colicchio R., Tomaiuolo R., Salvatore P. Microbiological evaluation and sperm DNA fragmentation in semen samples of patients undergoing fertility investigation // Genes. 2021. Vol. 12 (5). P. 654.

6. Vander H., Prabha V Alterations in human sperm parameters as a corollary of incubation with various uropathogenic microorganisms // Gynecology and Reproductive Endocrinology. 2019. Vol. 3, no. 1. P. 6-12.

7. Ibadin O. K., Ibeh I. N. Bacteriospermia and sperm quality in infertile male patient at University of Benin Teaching Hospital, Benin City, Nigeria // Malaysian Journal of Microbiology. 2008. Vol. 4, no. 2. P. 65-67.

8. Ворошилина Е. С., Зорников Д. Л., Иванов А. В., Почерников Д. Г., Паначева Е. А. Микробиота эякулята у пациентов с нормозооспермией по результатам исследования методом ПЦР в реальном времени // Вестник Российского государственного медицинского университета. 2021. № 5. С. 57-65.

9. Почерников Д. Г., Постовойтенко Н. Т., Стрельников А. И. Сравнительный анализ культурального и молекулярно-генетического методов исследования микробиоты эякулята при мужской инфертильности // Андрология и генитальная хирургия. 2019. Т. 20, № 2. С. 40-47.

10. Паначева Е. А. Прогнозирование эффективности эмбриологического этапа вспомогательных репродуктивных технологий на основании оценки микробиоты эякулята: дис канд. мед. наук. Челябинск, 2023. 140 с.

11. Kaufman L., Rousseeuw P. J. Clustering by means of medoids // Statistical Data Analysis based on the L1 Norm / ed. Y. Dodge. North Holland: Amsterdam, 1987. P. 405-416.

12. Rousseeuw P. J. Silhouettes: A graphical aid to the interpretation and validation of cluster analysis // Journal of Computational and Applied Mathematics. 1987. Vol. 20. P. 53-65.

13. Ivanov I. B., Kuzmin M. D., Gritsenko V. A. Microflora of the seminal fluid of healthy men and men suffering from chronic prostatitis syndrome // International Journal of Andrology. 2009. Vol. 32, no. 5. P. 462-467.

14. Weng S.-L., Chiu C.-M., Lin F.-M., Huang W.-C., Liang C., Yang T., Liu C.-Y., Wu W.-Y., Chang Y-A., Chang T.-H., Huang H.-D. Bacterial communities in semen from men of infertile couples: metagenomic sequencing reveals relationships of seminal microbiota to semen quality // PLoS one. 2014. Vol. 9, no. 10. P. e110152.

15. Valcarce D. G, Genoves S., Riesco M. F., Martorell P, Herraez M. P., Ramon D, Robles V. Probiotic administration improves sperm quality in asthenozoospermic human donors // Beneficial Microbes. 2017. Vol. 8, no. 2. P. 193-206.

16. Почерников Д. Г., Постовойтенко Н. Т., Гетьман В. В., Галкина И. С. Диагностическая значимость выявления Lactobacillusspp. в эякуляте // Вестник Российского государственного медицинского университета. 2020. № 3. С. 42-48.

17. Yang H., Zhang J., Xue Z., Zhao C., Lei L., Wen Y., Dong Y., Yang J., Zhang L. Potential pathogenic bacteria in seminal microbiota of patients with different types of dysspermatism // Scientific Reports. 2020. Vol. 10, no. 1. P. 1-11.