АНАЛИЗ МИКРОБИОТЫ ВЛАГАЛИЩА ВИЧ-ИНФИЦИРОВАННЫХ ЖЕНЩИН В ЗАВИСИМОСТИ ОТ НАЛИЧИЯ ИЛИ ОТСУТСТВИЯ ПРЕГРАВИДАРНОЙ ПОДГОТОВКИ

Цель исследования: изучить состав микробиоты влагалища ВИЧ-инфицированных женщин в зависимости от отсутствия или наличия прегравидарной подготовки с партнером и без него. Материалы и методы. В когортное исследование было включено 90 женщин репродуктивного возраста с 3 и 4А стадией ВИЧ-инфекции без жалоб и симптомов воспаления. Обследуемые были разделены на три группы по 30 человек:1 группа – женщины без прегравидарной подготовки, 2 группа – женщины с прегравидарной подготовкой без партнера, 3 группа – женщины с прегравидарной подготовкой, включавшей в себя антиретровирусную терапию, совместно с партнером. Выполнен посев влагалищной жидкости на искусственные питательные среды, произведена идентификация всех выделенных микроорганизмов с использованием MALDI-ToF массспектрометрии на приборе «Microflex LT» («Bruker Corporation», США), осуществлена статистическая обработка результатов. Для сравнения групп были применены критерии Краскела-Уоллиса, Манна-Уитни и индекс Симпсона. Результаты. Установлено, что у женщин без прегравидарной подготовки общая бактериальная масса лактобацилл достоверно ниже, чем у женщин с подобной подготовкой с партнером (р = 0,004) и без него (р = 0,007), достоверно ниже суммарное количество лактобацилл (р = 0,005); достоверно больше бактериальная масса стафилококков и стрептококков (р = 0,009); достоверно выше суммарное количество высеянных микроорганизмов (р = 0,004) на фоне увеличенной вирусной нагрузки (р = 0,001). У женщин с прегравидарной подготовкой имеются тенденции к преобладанию в микробиоте Lactobacillus gasseri (р = 0,058), Lactobacillus salivarius (р = 0,076), в группе без прегравидарной подготовки – Lactobacillus jensenii (р = 0,059). Индекс биоразнообразия выше в группах без прегравидарной подготовки и с прегравидарной подготовкой совместно с партнером. Заключение. Отсутствие прегравидарной подготовки у ВИЧ-инфицированных женщин обусловливает наличие высокого микробного разнообразия, низкую общую бактериальную массу, небольшую суммарную численность видов лактобацилл, а также возникновение тенденции к преобладанию Lactobacillus jensenii и увеличению анаэробной флоры микробиоты влагалища.

1. Будиловская О. В., Крысанова А. А., Шипицына Е. В., Переверзева Н. А., Воробьева Н. Е., Герасимова Е. Н., Григорьев А. Н., Савичева А. М. Диагностика вагинальных инфекций с учетом профилей лактобациллярной микрофлоры и локального иммунного ответа слизистой влагалища // Молекулярная медицина. 2020. № 3. С. 56-64. doi: 10.29296/24999490-2020-03-07.

2. Будиловская О. В., Крысанова А. А., Спасибова Е. В., Переверзева Н. А., Воробьева Н. Е., Цыпурдеева Н. Д., Григорьев А. Н., Савичева А. М. Дифференциальная экспрессия генов местного иммунного ответа во влагалище: значение для диагностики вагинальных инфекций // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2019. Т. 168, № 11. С. 588-592.

3. Клинические рекомендации по диагностике и лечению заболеваний, сопровождающихся патологическими выделениями из половых путей женщин / под ред. Прилепской В. Н., Кира Е. Ф. М. : ГЭОТАР-Медиа, 2019. 56 с.

4. Савичева А. М., Шалепо К. В., Спасибова Е. В., Будиловская О. В., Крысанова А. А., Хуснутдинова Т. А., Шипицына Е. В. Микробиота урогенитального тракта женщин: значение в репродукции // Проблемы медицинской микологии. 2020. Т. 22, № 3. С. 123.

5. Синякова А. А., Шипицына Е. В., Будиловская О. В., Болотских В. М., Савичева А. М. Клинико-анамнестические и микробиологические предикторы невынашивания беременности // Журнал акушерства и женских болезней. 2019. Т. 68, № 2. С. 59-70. doi: 10.17816/JOWD68259-70.

6. Ходжаева З. С., Гусейнова Г. Э., Муравьева В. В., Донников А. Е., Мишина Н. Д., Припутневич Т. В. Характеристика микробиоты влагалища у беременных с досрочным преждевременным разрывом плодных оболочек // Акушерство и гинекология. 2019. no. 12. С. 66-74. doi: 10.18565/aig.2019.12.66-74.

7. Mls J., Stráník J., Kacerovský M. Lactobacillus iners-dominated vaginal microbiota in pregnancy // Ceska Gynekol. 2019. Vol. 84, no. 6. P. 463-467.

8. Veščičík P., Kacerovská I. Musilová, Stráník J., Štěpán M., Kacerovský M. Lactobacillus crispatus dominant vaginal microbita in pregnancy // Ceska Gynekol. 2020. Vol. 85, no. 1. P. 67-70.

9. Abdool Karim S. S., Passmore J. S., Baxter C. The Microbiome and HIV Prevention Strategies in Women // Journal of the International AIDS Society. 2019. Vol. 13, no. 1. P. 81-87. doi: org/10.1002/jia2.25300.

10. Bayigga L., Kateete D. P., Anderson D. J., Sekikubo M., Nakanjako D. Diversity of vaginal microbiota in sub-Saharan Africa and its effects on HIV transmission and prevention // Am. J. Obstet. Gynecol. 2019. Vol. 220, no. 2. P. 155-166. doi: 10.1016/j.ajog.2018.10.014.

11. Price J. T., Vwalika B., Hobbs M., Nelson J. A. E., Stringer E. M., Zou F., Rittenhouse K. J., Azcarate-Peril A., Kasaro M. P., Stringer J. S. A. Highly diverse anaerobe-predominant vaginal microbiota among HIV-infected pregnant women in Zambia // PLoS One. 2019. Vol. 14, no. 10. e0223128. doi:10.1371/journal.pone.0223128.

12. Short C. S., Brown R., Quinlan R. A., Shattock R. J., Bennett P. R., Taylor G., MacIntyre D. A. The vaginal microbiome in pregnancy differs by HIV status, ART exposure, and class // Conference on Retroviruses and Opportunistic Infections (4-7 March 2018). Boston, MA. no. 269 (P-B7).

13. Srinivasan S., Richardson B. A., Wallis J., Fiedler T. L., Dezzutiet C. S., Chirenje Z. M., Livant E. W., Fredricks D. N., Hillier S. L., Marrazzo J. Vaginal microbiota and HIV acquisition risk among African women // Conference on Retroviruses and Opportunistic Infections (4-7 March 2018). Boston, MA. no. 268 (P-B7).

14. Shipitsyna E., Khusnutdinova T., Budilovskaya O., Krysanova A., Shalepo K., Savicheva A., Unemo M. Bacterial vaginosis-associated vaginal microbiota is an age-independent risk factor for Chlamydia trachomatis, Mycoplasma genitalium and Trichomonas vaginalis infections in low-risk women, St. Petersburg, Russia // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2020. Vol. 39, no. 7. P. 1221-1230. doi: 10.1007/s10096-020-03831-w.

15. Shipitsyna E., Krysanova A., Shalepo K., Savicheva A., Guschin A., Unemo M. Quantitation of all four Gardnerella vaginalis clades detects abnormal vaginal microbiota characteristic of bacterial vaginosis more accurately than putative G. vaginalis sialidase a gene count // Molecular Diagnosis and Therapy. 2019. Vol. 23, no. 1. P. 139-147. doi: 10.1007/s40291-019-00382-5.

16. Torcia, M. G. Interplay among Vaginal Microbiome, Immune Response and Sexually Transmitted Viral Infections // International Journal of Molecular Sciences. 2019. Vol. 20, no. 2. P. 266. doi: 10.3390/ijms20020266.

17. Кира Е. Ф., Коршакова Н. Ю. Открытое рандомизированное плацебо-контролируемое изучение эффективности и безопасности монотерапии бактериального вагиноза вагинальным применением молочной кислоты // Акушерство и гинекология. 2018. № 5. С. 96-101. doi: 10.18565/aig.2018.5.96-101.

18. Кира Е. Ф., Коршакова Н. Ю., Семенова К. Е. Эффективность вагинальных суппозиториев с молочной кислотой в монотерапии бактериального вагиноза // Репродуктивное здоровье. Восточная Европа: международный научно-практический журнал. 2018. Т. 8, № 6. С. 771-778.

19. Doyle R., Gondwe A., Fan Y. M., Maleta K., Ashorn P., Klein N., Harris K. A. Lactobacillus-deficient vaginal microbiota dominate postpartum women in rural Malawi // Appl. Environ. Microbiol. 2018. Vol. 84, no. 6. e02150-17. doi: 10.1128/AEM.02150-17.

20. McClelland R. S., Lingappa J. R., Srinivasan S., Kinuthia J., John-Stewart G. C., Jaoko W., Richardson B. A., Yuhas K., Fiedler T. L., Mandaliya K. N., Munch M. M., Mugo N. R., Cohen C. R., Baeten J. M., Celum C., Overbaugh J., Fredricks D. N. Evaluation of the association between the concentrations of key vaginal bacteria and the increased risk of HIV acquisition in African women from five cohorts: a nested case-control study // Lancet Infect. Dis. 2018. Vol. 18, no. 5. P. 554-564.