Морфогенез верхней челюсти лабораторных крыс в онтогенезе

Верхняя челюсть крыс является уникальным экспериментальным объектом в медикобиологических исследованиях и используется для моделирования различных патологических процессов: переломов, постменопаузального остеопороза, нарушений дентиногенеза и энамелогенеза. Верхняя челюсть крыс и человека отличаются по ряду морфофункциональных аспектов, связанных с особенностями питания и строением резцов у грызунов, однако всестороннее изучение процессов ее развития, роста и формообразования у крыс в эксперименте будет способствовать дальнейшему пониманию особенностей ее организации у человека.

Цель исследования: провести анализ отечественной и зарубежной литературы, обобщить и систематизировать сведения о строении верхней челюсти лабораторных крыс на различных этапах онтогенеза. Поиск литературы по тематике представленной работы был проведен с использованием баз данных Elibrary и PubMed до 10.09.2024 г. включительно. Источники литературы были проанализированы вне зависимости от даты, языка и типа (полнотекстовый или только аннотации). Всесторонне рассмотрены вопросы, касающиеся источников и периодов развития, макроскопического строения верхней челюсти, особенностей строения альвеолярной кости и ее реакции на экзогенные стимулы, особенностей структурной организации эмалевого органа, дентина, цемента, пульпы, периодонта, их кровоснабжения и иннервации в различные периоды онтогенеза. Несмотря на различия в структурно-функциональной организации верхней челюсти человека и крыс, базовое устройство их альвеолярной кости, дентина, эмали, периодонта и пульпы имеет много общего.

1. Соловьева И. В., Пилавов А. М., Рябков В. С., Труфанова М. С. Влияние имплантации в дефект большеберцовых костей гидроксилапатитного материала ОК-015 на структуру межрадикулярной альвеолярной кости верхней челюсти // Морфологический альманах имени В. Г. Ковешникова. 2023. Т. 21, № 2. С. 79–84.

2. Соловьева И. В., Пилавов А. М., Рябков В. С., Труфанова М. С. Влияние имплантации в дефект большеберцовых костей гидроксилапатитного материала ОК-015 на формообразование верхней челюсти белых крыс // Морфологический альманах имени В. Г. Ковешникова. 2023. Т. 21, № 3. С. 80–85.

3. Yang H., Pan H., Yu F., Chen K., Shang G., Xu Y. A novel model of bisphosphonate-related osteonecrosis of the jaw in rats // International Journal of Clinical and Experimental Pathology. 2015. Vol. 8, no. 5. P. 5161–5167.

4. Akiba Y., Eguchi K., Akiba N., Uoshima K. Biological Evaluation of Implant Drill Made from Zirconium Dioxide // Clinical Implant Dentistry and Related Research. 2017. Vol. 19, no. 2. P. 306–315. doi: 10.1111/cid.12452.

5. Mancinelli E., Capello V. Anatomy and Disorders of the Oral Cavity of Rat-like and Squirrel-like Rodents // Veterinary Clinics of North America: Exotic Animal Practice. 2016. Vol. 19, no. 3. P. 871–900. doi: 10.1016/j.cvex.2016.04.008.

6. Yamada S. Inhibitory action of sodium salicylate on the growth of upper jaw and tibia in rats // Japanese Journal of Pharmacology. 1977. Vol. 27, no. 2. P. 303–310. doi: 10.1254/jjp.27.303.

7. Mohammed C. I. Growth pattern of the rat maxilla from 16 days’ insemination age to 30 days after birth // American Journal of Anatomy. 1957. Vol. 100, no. 1. P. 115–165. doi: 10.1002/aja.1001000106.

8. Misawa Y., Kageyama T., Moriyama K., Kurihara S., Yagasaki H., Deguchi T., Ozawa H., Sahara N. Effect of age on alveolar bone turnover adjacent to maxillary molar roots in male rats: A histomorphometric study // Archives of Oral Biology. 2007. Vol. 52, no. 1. P. 44–50. doi: 10.1016/j.archoralbio.2006.06.012.

9. Liu C. C., Baylink D. J. Differential response in alveolar bone osteoclasts residing at two different bone sites // Calcified Tissue International. 1984. Vol. 36. P. 182–188.

10. Sodek J., Mckee M. D. Molecular and cellular biology of alveolar bone // Periodontology. 2000. Vol. 24. P. 99–126.

11. Zhou S., Yang Y., Ha N., Zhang P., Ma X., Gong X., Hong Y., Yang X., Yang S., Dai Q., Jiang L. The Specific Morphological Features of Alveolar Bone // Journal of Craniofacial Surgery. 2018. Vol. 29, no. 5. P. 1216–1219. doi: 10.1097/SCS.0000000000004395.

12. Gluhak-Heinrich J., Gu S., Pavlin D., Jiang J. X. Mechanical loading stimulates expression of connexin 43 in alveolar bone cells in the tooth movement model // Cell Communication & Adhesion. 2006. Vol. 13. P. 115–125.

13. Tsolakis A. I., Khaldi L., Makou M., Lyritis G. P., Spyropoulos M. N., Dontas I. A. Cortical bone response adjacent to applied light orthodontic forces in ovariectomized rats // Journal of Musculoskeletal and Neuronal Interactions. 2008. Vol. 8, no. 4. P. 375–378.

14. Arai K., Tanaka S., Yamamoto-Sawamura T., Sone K., Miyaishi O., Sumi Y. Aging changes in the periodontal bone of F344/N rat // Archives Gerontology and Geriatrics. 2005. Vol. 40, no. 3. P. 225–229. doi: 10.1016/j.archger.2004.08.005.

15. López Otero R., Carranza F. A. Jr, Cabrini R. L. Histometric study of age changes in interradicular bone of Wistar rats // Journal of Periodontal Research. 1967. Vol. 2, no. 1. P. 40–45. doi: 10.1111/j.1600-0765.1967.tb01994.x.

16. Cerri P. S. Osteoblasts engulf apoptotic bodies during alveolar bone formation in the rat maxilla // Anatomical Record Part A: Discoveries in Molecular, Cellular, and Evolutionary Biology. 2005. Vol. 286, no. 1. P. 833–840. doi: 10.1002/ar.a.20220.

17. Suzuki A. Ultrastructural and cytochemical studies on the dentinogenesis of rat incisors at the lingual side // Japanese Journal of Oral Biology. 1985. Vol. 27. P. 215–253.

18. Mishima H., Sakae T. Demonstration of structural variation in rat incisor dentin as determined by the x-ray Laue method // Journal of Dental Research. 1986. Vol. 65, no. 6. P. 932–934. doi: 10.1177/00220345860650061501.

19. Ahlgren S. A. Normal rate of formation of dentine in upper incisors of white rats // Archives of Oral Biology. 1967. Vol. 12, no. 7. P. 907–908. doi: 10.1016/0003-9969(67)90113-6.

20. Yoshida S., Ohshima H. Distribution and organization of peripheral capillaries in dental pulp and their relationship to odontoblasts // Anatomical Record. 1996. Vol. 245, no. 2. P. 313–326. doi: 10.1002/(SICI)1097-0185(199606)245:23.0.CO;2-S.

21. Ohshima H. Ultrastructural changes in odontoblasts and pulp capillaries following cavity preparation in rat molars // Archives of Histology and Cytology. 1990. Vol. 53, no. 4. P. 423–438. doi: 10.1679/aohc.53.423.

22. Turner D. F., Marfurt C. F., Sattelberg C. Demonstration of physiological barrier between pulpal odontoblasts and its perturbation following routine restorative procedures: A horseraddish peroxidase tracing study in the rat // Journal of Dental Research. 1989. Vol. 68. P. 1262–1268.

23. Pinzon R. D., Kozlov M., Burch W. P. Histology of rat molar pulp at different ages // Journal of Dental Research. 1967. Vol. 46, no. 1. P. 202–208. doi: 10.1177/00220345670460011101.

24. Pinzon R. D., Toto P. D., O'Malley J. J. Kinetics of rat molar pulp cells at various ages // Journal of Dental Research. 1966. Vol. 45, no. 3. P. 934–938. doi: 10.1177/00220345660450037101.

25. Nishikawa S. Developmental changes in pulpal sensory innervation of rat incisors and molars shown on a single injection of the fluorescent dye AM1-43 // Anatomical Science International. 2007. Vol. 82, no. 4. P. 227–232. doi: 10.1111/j.1447-073X.2007.00190.x.

26. Kiely M. L., Wilde J. L. Circadian mitotic rhythms in the cervical tissues of the rat maxillary incisor // Journal of Dental Research. 1974. Vol. 53, no. 6. P. 1432–1438. doi: 10.1177/00220345740530062401.

27. MacNeil R. L., Somerman M. J. Molecular factors regulating development and regeneration of cementum // Journal of Periodontal Research. 1993. Vol. 28 (6 Pt 2). P. 550–559. doi: 10.1111/j.1600-0765.1993.tb02123.x.

28. Kagayama M., Sasano Y., Mizoguchi I., Takahashi I. Confocal microscopy of cementocytes and their lacunae and canaliculi in rat molars // Anatomy and Embryology (Berlin). 1997. Vol. 195, no. 6. P. 491–496. doi: 10.1007/s004290050068.

29. Armitage G. C. Cementum // Orban’s Oral histology and embryology / ed. S. N. Bhaskar. Mosby: London, 1990. 180–203.

30. Kagayama M., Sasano Y., Hirata M., Mizoguchi I., Takahashi I. An improved mounting method for observation of thick specimen using confocal microscopy // Biotechnic and Histochemisrty. 1996. Vol. 71. P. 231–233.

31. Kagayama M., Akita H., Sasano Y., Kindaichi K. Localization of uncalcified cementum in adult rat molar roots and its relation to physiological tooth movement // Archives of Oral Biology. 1994. Vol. 39. P. 829–832.

32. Schroeder H. E. Periodontal ligament // The periodontium / ed. H. E. Schroeder. Springer, Berlin, 1986b. S. 170–232.

33. Matena V. Periodontal ligament of a rat incisor tooth // Journal of Periodontology. 1973. Vol. 44, no. 10. P. 629–635. doi: 10.1902/jop.1973.44.10.629.

34. Kawahara I., Takano Y., Sato O., Maeda T., Kannari K. Histochemical and immunohistochemical demonstration of macrophages and dendritic cells in the lingual periodontal ligament of rat incisors // Archives of Histology and Cytology. 1992. Vol. 55, no. 2. P. 211–217. doi: 10.1679/aohc.55.211.

35. Häkkinen L., Oksala O., Salo T., Rahemtulla F., Larjava H. Immunohislochemical localization of proteoglycans in human periodontium // Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 1993. Vol. 41. P. 1689–1699.

36. Kuroiwa M., Tachikawa T., Izumiyama N., Takubo K., Yoshiki S., Higashi S. Ultrastructure of the rat periodontal ligament as observed with quick-freeze, deep-etch and replica methods: arrangement of collagen and related structures // Acta Anatomica (Basel). 1996. Vol. 157, no. 4. P. 291–302. doi: 10.1159/000147891.

37. Imai H., Ri S., Nobuto T., Tanda H., Yanagawa K., Yamaoka A. A Study on periodontal microvasculature // Journal of Japanese Society of Periodontology. 1994. Vol. 36. P. 578–585.

38. Yoshida S. Changes in the vasculature during tooth eruption of the rat molar // Japanese Association for Oral Biology. 1984. Vol. 26. P. 94–115.

39. Sato O., Maeda T., Kobayashi S., Iwanaga T., Fujita T., Takahashi Y. Innervation of periodontal ligament and dental pulp in the rat incisor: an immunohistochemical investigation of neurofilament protein and glia-specific S100 protein // Cell and Tissue Research. 1988. Vol. 251, no. 1. P. 13–21. doi: 10.1007/BF00215442.

40. Warshawsky H., Josephsen K., Thylstrup A., Fejerskov O. The development of enamel structure in rat incisors as compared to the teeth of monkey and man // Anatomical Record. 1981. Vol. 200, no. 4. P. 371–399. doi: 10.1002/ar.1092000402.

41. Halse A. Location and first appearance of rat incisor pigmentation // Scandinavian Journal of Dental Research. 1972. Vol. 80, no. 5. P. 428–433. doi: 10.1111/j.1600-0722.1972.tb00308.x

42. Halse A., Selvig K. A. Incorporation of iron in rat incisor enamel // Scandinavian Journal of Dental Research. 1974. Vol. 82, no. 1. P. 47–56. doi: 10.1111/j.1600-0722.1974.tb01900.x.

43. Selvig K. A., Halse A. The ultrastructural localization of iron in rat incisor enamel // Scandinavian Journal of Dental Research. 1975. Vol. 83, no. 2. P. 88–95. doi: 10.1111/j.1600-0722.1975.tb00423.x.

44. Halse A., Selvig K. A. Mineral content of developing rat incisor enamel // Scandinavian Journal of Dental Research. 1974. Vol. 82, no. 1. P. 40–46. doi: 10.1111/j.1600-0722.1974.tb01899.x.

45. Moorrees C. F. A., Reed R. B. Changes in dental arch dimensions expressed on the basis of tooth eruption as a measure of biologic age // Journal of Dental Research. 1965. Vol. 44. P. 129–141.

46. Garn S. M., Lewis A. B., Kerewsky R. S. Genetic, nutritional and maturational correlates of dental development // Journal of Dental Research. 1965. Vol. 44. P. 228–242.

47. Schour I., Massler M. The teeth // Farris E. J., Griffith, J. Q. The rat in laboratory investigation. 2 nd ed. Lippincott: Philadelphia, 1949. P. 104–165.